磁珠法凭借自动化程度高、提取效率优、适配高通量样本等优势，成为临床检验、分子育种、食品安全、科研实验室DNA/RNA 提取主流方案。不少实验人员常会遇到核酸浓度偏低、纯度不达标、产物降解、批次数据差异大等难题，大多并非试剂与磁珠品质问题，而是实操细节疏漏所致。

下面就介绍一下磁珠使用的注意事项：

由于重力和磁珠特性，在长时间静置的条件下，容易沉降，出现磁珠悬液不均匀，颜色也不均匀的现象。磁珠受重力影响易发生沉降，导致悬液不均一。取用前必须充分涡旋混匀，直至磁珠完全悬浮、整管悬液色泽均匀。若磁珠分散不均，会直接造成核酸提取浓度、纯度出现偏差。

使用前必须确定磁珠起始量与获得的DNA/RNA量直接相关。磁珠用量过多，会增加对杂质的非特异性吸附，并可能因洗脱液相对不足而降低洗脱效率，导致纯度下降或产量降低。磁珠过少，则结合位点不足，导致产量偏低。在使用磁珠时，还需保证移液精准：及时擦拭吸头外壁残留液滴，定期校准移液器，严格遵循标准移液操作。

选择磁珠时，根据核酸类型（DNA/RNA）、样本来源（血液、组织、FFPE、拭子等）及下游应用（PCR、测序、克隆等），选择表面修饰（如硅基/羧基/氨基/oligo(dT)等）和粒径相匹配的磁珠。粒径越小比表面积越大、结合能力越强，但磁响应时间可能延长；需根据实验需求权衡。

使用磁珠提取DNA/RNA时，常常会存在“移出废液”的步骤，在这些步骤中会丢失一些磁珠是正常的，所以在移液时应尽量减少磁珠的损耗。

磁珠悬液属于固液混合物，移取前必须充分涡旋后立即吸取（避免边吸边沉降），保持手指稳定，吸液速度不要太快。此外，磁珠用量需参照说明书或预实验优化。

磁珠在保存时切勿冷冻保存，应防止磁珠冻结（有特殊说明的磁珠除外）。磁珠冷冻后再解冻，表面容易出现裂痕，影响性能，从而影响提取效果。

一般情况下磁珠的保存条件为：2-8℃。值得注意的是，使用前将磁珠置于室温平衡（一般5-15min，具体参照产品说明书），避免低温导致试剂体系温度波动，影响结合效率。